植物dna怎么取,植物dna提取的方法有哪些

怎样取植物样本用来验DNA

你可百度一下“植物DNA提取”，就会有很多实验方法出来了。

如：植物DNA的CTAB提取法：

1 称取新鲜叶片2-3g,剪碎放入研钵中,在液氮中研磨成粉末。2 将粉末转移到的加有7ml经预热的1 5×CTAB提取缓冲液15ml离心管中,迅速混匀后置于65℃水浴中,温育30min。3 取出离陆斗心管,冷却至室温,加入氯仿/异戊醇(24:1),充分混匀,室温下2300×g离心20min。4 将上清转移至另一新的15ml离心管掘悉模中,加入1/10体积10%的CTAB和等体积的氯仿/异戊醇。充分混判缓匀,2300×g离心20min。5 转移上清至另一新的15ml离心管中,加入等体积1%的CTAB沉淀缓冲液,轻轻摇晃至形成DNA絮状沉淀。1000×g离心10min,使DNA沉淀于管底。6 加入1 5-2ml的1mol/LNaCl及5μlRNase置于56℃水浴中过夜。待DNA完全溶解后,加2-3ml4℃预冷的95%的冰乙醇使DNA沉淀,挑出DNA,置于1 5ml离心管中,用70%乙醇清洗30min,用离心机甩5s,倒出70%乙醇,再用95%乙醇浸泡5min,倒出95%乙醇,在超净工作台上吹干。7 将风干的DNA直接在4℃保存备用或溶于100μlTE溶液中于-20℃保存。

植物DNA提取的原理和方法是什么？

原理就是去掉植物春迟辩细胞壁

细胞膜

质体

线粒体

叶绿体

剩下细胞核了。就是DNA了。

通常采用机械研磨的方法破碎植物的组织和细胞，由于植物细胞匀浆含扒缺有多种酶类(尤其是氧化酶类)对DNA的抽提产生不利的影响，在抽提缓冲液中需加入抗氧化剂或强还原剂(如巯基乙醇)以降低这些酶类的活性。在液氮中研磨，材料易于破碎，并减少研磨过程中各种酶类的作用。

十二烷基肌酸钠(sarkosyl)、十六烷基三甲基溴化铵(hexadyltrimethyl

ammomum

bromide，简称为CTAB)、十二烷基硫酸钠(sodium

dodecyl

sulfate，简称SDS)等离子型表面活性剂，能溶解细胞膜和核膜蛋白，使核蛋旦拿白解聚，从而使DNA得以游离出来。再加入苯酚和氯仿等有机溶剂，能使蛋白质变性，并使抽提液分相，因核酸(DNA、RNA)水溶性很强，经离心后即可从抽提液中除去细胞碎片和大部分蛋白质。上清液中加入无水乙醇使DNA沉淀，沉淀DNA溶于TE溶液中，即得植物总DNA溶液

有什么很简单的方法提取植物的DNA

将植物放入研磨器中，加入洗涤剂研老悔磨，然后倒入烧派含孙尘链杯，加无水乙醇，用玻璃棒轻轻搅拌，会发现白色丝状物缠绕在玻璃棒上，这就是DNA

有提取植物线粒体中DNA的具体步骤啊?？

首先用果胶酶和纤维素酶将植物细胞的细胞壁去掉

然后将原生质层放入清水中,让细胞吸胀破裂

再通过离心的方法分掘拆离出细胞器,并提取线粒体

将线粒体研磨配成溶液

由于线粒体的组成有水、蛋白质和脂质

将溶液过虑,然后用浓盐法提取并提纯DNA.,4,首先先用果胶判如酶和掘散启纤维素酶让植物的细胞壁去掉

然后在让植物细胞吸水胀破，让细胞器都出来

再通过密度梯度离心的方法分出细胞器

分出线粒体后，将线粒体磨碎，融入水中，过滤。